先前小達(dá)君給大家介紹了Strep-tag? 的歷史(點(diǎn)此回顧您想了解的Strep-tag:Strep-Tactin?XT發(fā)展史都在這里!),現(xiàn)在再隆重介紹 Strep-tag? 在哺乳類細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)的應(yīng)用。另外,小達(dá)君保證您看完后會(huì)心動(dòng),然后回來參加活動(dòng)(點(diǎn)此參加分享IBA蛋白純化體驗(yàn),獲贈(zèng)蛋白純化填料哦!),獲贈(zèng)蛋白純化填料哦!
雖然大腸桿菌E.coli表達(dá)系統(tǒng)經(jīng)濟(jì)實(shí)惠,但由于缺乏重要的脂類,分子螫合物,以及重要的翻譯后修飾,用它表達(dá)真核蛋白,可能會(huì)影響蛋白本身的折疊及功能,以膜蛋白為例,大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)能影響目標(biāo)蛋白在細(xì)胞膜的插入位置及其應(yīng)有的功能[1]。除此之外,當(dāng)目標(biāo)蛋白大于50kDa時(shí),使用大腸桿菌系統(tǒng)可能表達(dá)出不完整的蛋白[2]。
所以,為了研究特定蛋白的功能(如:信號(hào)通路),生產(chǎn)較大型的蛋白,或進(jìn)行高解析度的結(jié)構(gòu)分析,愈來愈多的實(shí)驗(yàn)室選擇哺乳類表達(dá)系統(tǒng)來生產(chǎn)融合蛋白。其原因?yàn)椴溉閯?dòng)物細(xì)胞生產(chǎn)出的重組蛋白與人類蛋白十分相似,有較完整的蛋白折疊、組合及翻譯后修飾[3]。因此,愈來愈多科學(xué)家們更加關(guān)注于—如何從哺乳類細(xì)胞中高效的純化目標(biāo)蛋白。
1.親和標(biāo)簽的選擇
首先,需考慮選擇合適的親和標(biāo)簽。常用于哺乳動(dòng)物表達(dá)系統(tǒng)的親和標(biāo)簽有His-tag、FLAG-tag、GST-tag及Strep-tag?等[4-12],整理于下表:
親和標(biāo)簽 |
氨基酸數(shù)量 |
配體 |
平衡解離常數(shù)(Kd) 范圍 |
洗脫方式 |
一步驟 |
His-tag |
2-10, 多為6 |
Ni2+-NTA, |
nM |
Imidazole 20–250 mM或low pH |
* |
FLAG-tag, 3x FLAG |
8, 22 |
抗Flag抗體 |
nM |
pH 3.0;2–5 mM EDTA或FLAG短肽 |
*** |
Glutathione S-transferase (GST-tag) |
211 |
Glutathione |
nM |
5–10 mM reduced glutathione |
** |
Strep-tag?II (ST), Twin-Strep-tag? (TST) |
8, 28 |
Strep-Tactin? |
nM (with TST) |
2.5 mM desthiobiotin |
*** |
Strep-Tactin?XT |
pM (with TST) |
50 mM biotin |
*** |
*這些親和標(biāo)簽在使用上各有千秋。
使用His-tag時(shí),常遇到的問題是寄主蛋白與填料的非特異性結(jié)合,在哺乳動(dòng)物重組蛋白的純化過程中,這樣的情況更為明顯。由于系統(tǒng)中有很多含有組氨酸(histidine)的殘基的蛋白,這種蛋白結(jié)構(gòu)與his-tag相似,容易與鎳柱結(jié)合,因此導(dǎo)致目標(biāo)蛋白純度降低[13]。
FLAG-tag系統(tǒng)可在非變性條件下進(jìn)行純化,能得到高純度、有活性的蛋白,但其缺點(diǎn)為純化介質(zhì)較為不穩(wěn)定,且純化成本高上許多[5]。
另一常用的標(biāo)簽為GST-tag,一個(gè)26kDa的蛋白,其特點(diǎn)是表達(dá)量高,具高度抗原性,常用來增加目標(biāo)蛋白的溶解度,但常常會(huì)影響目標(biāo)蛋白的特性,一般推薦純化后將標(biāo)簽去除[8]。
而Strep-tag?(包含Strep-tag?II或是Twin-Strep-tag?),都是短肽標(biāo)簽,分別為8或28個(gè)氨基酸,一般不干擾蛋白折疊或活性,因此適合用于蛋白功能性研究[5]。Strep-tag?可以特異性地結(jié)合在Strep-Tactin?(二代介質(zhì))或Strep-Tactin?XT(三代介質(zhì))的生物素的結(jié)合位點(diǎn)。洗脫時(shí)使用的脫硫生物素(適用于二代)或生物素(三代),對(duì)同樣的結(jié)合位點(diǎn)有更高的親和力,能將目標(biāo)蛋白從同樣位置移除,因此得到的目標(biāo)蛋白純度一般高于95%[12]。
同時(shí),三代的 Strep-Tactin?XT與Strep-tag?蛋白的親和力大幅提升,直接加入含目標(biāo)蛋白的哺乳細(xì)胞的培養(yǎng)上清,即可高效純化出所需蛋白(注:原本使用二代需先以Avidin或是BioLock將培養(yǎng)基中的生物素遮蔽,才不會(huì)影響純化表現(xiàn))。
2.三代Strep-Tactin?XT親和力顯著
圖A比較了His-tag與Strep-tag?直接加入哺乳細(xì)胞培養(yǎng)上清純化目標(biāo)蛋白的表現(xiàn)。
圖A
圖A:分別向Strep-Tactin?XT High Capacity 1ml重力柱(左)和Ni-NTA 1ml重力柱(右)中,同時(shí)加入含4mg mCherry-Twin-Strep-tag (TST)或mCherry-His-tag (His)螢光蛋白的ExpiCHO細(xì)胞培養(yǎng)上清(注:接下來的實(shí)驗(yàn)皆是取哺乳細(xì)胞表達(dá)某抗體后的上清,另加入高純度目標(biāo)蛋白進(jìn)行實(shí)驗(yàn))。由圖可見,Strep-Tactin?XT(左)能高效率的捕捉mCherry-TST,而右方的mCherry-His幾乎無法掛柱。
此外,我們也測(cè)試了其他的蛋白,例如SEAP(72 kDa)或抗體(mAb,其重鏈為55kDa)。圖B為以Strep-Tactin?XT純化SEAP-TST、mCherry-TST與mAb-TST的SDS-PAGE分析結(jié)果,可見對(duì)于不同蛋白,Strep-tag?系統(tǒng)都能純化出高純度的目標(biāo)蛋白。(注:紅色標(biāo)記處為 mCherry的降解產(chǎn)物,非雜帶)
圖B
因Strep-Tactin?XT與Twin-Strep-tag蛋白的高親和力,即使目標(biāo)蛋白的濃度低,使用Strep-Tactin?XT仍可以有效的捕捉上清中的目標(biāo)蛋白。表C整理了幾個(gè)實(shí)驗(yàn)的數(shù)據(jù),顯示當(dāng)目標(biāo)蛋白濃度低于20μg/ml時(shí),得率仍能達(dá)到幾近100%。
表C
3.Strep-Tactin?XT普適性高
除了上述實(shí)驗(yàn)所用的CHO細(xì)胞株外(中國(guó)倉(cāng)鼠卵巢細(xì)胞),另一常用于生產(chǎn)蛋白的哺乳動(dòng)物細(xì)胞株為HEK293(人胚胎腎細(xì)胞),使用上較CHO簡(jiǎn)單。我們測(cè)試了Strep-Tactin?XT的純化表現(xiàn):表D1為以Expi293表達(dá)SEAP-TST或mAb-TST蛋白后,目標(biāo)蛋白的濃度。圖D2為純化表現(xiàn)的SDS-PAGE分析。從中可知,與ExpiCHO培養(yǎng)基相同,直接將表達(dá)好的Expi293上清加入1ml Strep-Tactin?XT高載量重力柱中進(jìn)行純化,一樣能夠快速的得到高純度的目標(biāo)蛋白。
表D1
圖D2
綜上所述,Strep-tag?非常適合用在哺乳動(dòng)物細(xì)胞系中表達(dá)目標(biāo)蛋白,其純化過程也與常見的ExpiCHO及Expi293培養(yǎng)基相容,不須另外處理,讓實(shí)驗(yàn)流程更為便利。加上Strep-tag?系統(tǒng)在純度上的優(yōu)勢(shì),是目前在這個(gè)應(yīng)用上的絕佳選擇。
4. IBA哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)/純化蛋白相關(guān)產(chǎn)品
產(chǎn)品信息
表E1 含Twin-Strep-tag?的哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)載體
名稱 |
貨號(hào) |
Twin-Strep-tag? |
分泌信號(hào) |
規(guī)格 |
網(wǎng)站報(bào)價(jià) |
|
N端 |
C端 |
|||||
pCSG-IBA105 |
5-5105-001 |
√ |
|
|
5ug |
¥3,174 |
pESG-IBA105 |
5-4505-001 |
√ |
|
|
5ug |
¥3,174 |
pCSG-IBA103 |
5-5103-001 |
|
√ |
|
5ug |
¥3,174 |
pESG-IBA103 |
5-4503-001 |
|
√ |
|
5ug |
¥3,174 |
pCSG-IBA104 |
5-5104-001 |
√ |
|
√ |
5ug |
¥3,174 |
pESG-IBA104 |
5-4504-001 |
√ |
|
√ |
5ug |
¥3,174 |
pCSG-IBA102 |
5-5102-001 |
|
√ |
√ |
5ug |
¥3,174 |
pESG-IBA102 |
5-4502-001 |
|
√ |
√ |
5ug |
¥3,174 |
表E2 pCSG與pESG的區(qū)別
載體系列/內(nèi)建基因 |
pCSG |
pESG |
CMV Promoter |
√ |
√ |
oriP |
√ |
|
EBNA-1 |
√ |
|
SV40 origin |
√ |
√ |
NeoR |
√ |
√ |
CoIE1 + Amp |
√ |
√ |
BM40 |
√ |
√ |
表E3 IBA三代產(chǎn)品信息
名稱 |
貨號(hào) |
規(guī)格 |
網(wǎng)站報(bào)價(jià) |
Strep-Tactin?XT Superflow? 50% suspension |
2-4010-002 |
4 ml |
¥1,365 |
2-4010-010 |
20 ml |
¥4,814 |
|
2-4010-025 |
50 ml |
¥11,437 |
|
Strep-Tactin?XT Superflow? gravity flow columns |
2-4011-005 |
5×0.2 ml |
¥2,361 |
2-4012-001 |
1 ml |
¥1,012 |
|
2-4013-001 |
5 ml |
¥3,051 |
|
2-4014-001 |
10 ml |
¥5,734 |
|
Strep-Tactin?XT Superflow? cartridges (for ?kta/peristaltic pumps) |
2-4021-001 |
1 ml |
¥1,181 |
2-4022-001 |
5 ml |
¥3,051 |
|
Strep-Tactin?XT Superflow? high capacity 50% suspension |
2-4030-002 |
4 ml |
¥1,824 |
2-4030-010 |
20 ml |
¥6,562 |
|
2-4030-025 |
50 ml |
¥15,178 |
|
Strep-Tactin?XT Superflow? high capacity gravity flow columns |
2-4031-005 |
5×0.2 ml |
¥3,051 |
2-4032-001 |
1 ml |
¥1,365 |
|
2-4033-001 |
5 ml |
¥4,186 |
|
2-4034-001 |
10 ml |
¥7,880 |
|
Strep-Tactin?XT Superflow? high capacity cartridges (for ?kta/peristaltic pumps) |
2-4025-001 |
1 ml |
¥1,518 |
2-4026-001 |
5 ml |
¥4,431 |
|
MagStrep "type3"XT beads 5% suspension |
2-4090-002 |
2 ml |
¥2,724 |
Strep-Tactin?XT Spin Column Kit |
2-4151-000 |
1 kit |
¥2,300 |
Strep-Tactin?XT immobilization plate |
2-4101-001 |
1 plate |
¥796 |
Twin-Strep-tag? Capture Kit |
2-4370-000 |
1 kit |
請(qǐng)咨詢 |
參考文獻(xiàn)
[1] Sahdev S, Khattar SK, Saini KS (2008). Production of active eukaryotic proteins through bacterial expression systems: a review of the existing biotechnology strategies. Mol Cell Biochem., 307(1-2):249-64
[2] Dyson MR, Shadbolt SP, Vincent KJ, Perera RL, Mccafferty J (2004). Production of soluble mammalian proteins in Escherichia coli: identification of protein features that correlate with successful expression. BMC Biotechnol., 4:32. doi: 10.1186/1472-6750-4-32
[3] Khan KH (2013). Gene Expression in Mammalian Cells and its Applications. Adv Pharm Bull., 3(2): 257-63. doi: 10.5681/apb.2013.042
[4] Wegner GJ, Lee HJ, Corn RM (2002). Characterization and optimization of peptide arrays for the study of epitope-antibody interactions using surface plasmon resonance imaging. Anal Chem., 74(20):5161-8.
[5] Terpe K (2003). Overview of tag protein fusions: from molecular and biochemical fundamentals to commercial systems. Appl.Microbiol.Biotechnol.,60(5): 523-33. doi: 10.1007/s00253-002-1158-6
[6] Lichty JJ, Malecki JL, Agnew HD, Michelson-Horowitz DJ, Tan S (2005). Comparison of affinity tags for protein purification. Protein Expr Purif., 41(1):98-105.
[7] Tessema M, Simons PC, Cimino DF, Sanchez L, Waller A, Posner RG, Wandinger-Ness A, Prossnitz ER, Sklar LA (2006). Glutathione-S-transferase-green fluorescent protein fusion protein reveals slow dissociation from high site density beads and measures free GSH. Cytometry A., 69(5):326-34.
[8] Kimple ME, Brill AL, Pasker RL (2013). Overview of affinity tags for protein purification. Curr Protoc Protein Sci., 73: Unit 9.9. doi: 10.1002/0471140864.ps0909s73.
[9] GE Healthcare (2016). Affinity Chromatography Handbook, Vol. 2: Tagged Proteins.
[10] Thermo Fisher Scientific (2015). Protein Expression Handbook
[11] Dynamic Biosensors (2018) Application Note: High-affinity capturing of tagged proteins on the switchSENSE? biochip using Strep-Tactin?XT.
[12] IBA Lifesciences (2016) Application Note: Strep-Tactin?XT:Twin-Strep-tag?- Advantages compared to the His-tag purification system.
[13] Bornhorst JA, Falke JJ (2000). Purification of proteins using polyhistidine affinity tags. Methods Enzymol., 326:245-54.
IBA lifesciences(德國(guó)):IBA公司總部位于德國(guó)。二十年來,IBA以杰出的專利技術(shù)Strep-tag?系統(tǒng)為基礎(chǔ),發(fā)展出完整的產(chǎn)品組合,涵蓋重組蛋白表達(dá)純化與固定以及特定細(xì)胞從全血或相關(guān)體液中分離的技術(shù)。同時(shí),IBA也是全球領(lǐng)先的核酸合成專家,在DNA及RNA寡核苷酸的合成上已有超過二十年的經(jīng)驗(yàn),能根據(jù)客戶的選擇,生產(chǎn)含有特定染料或化學(xué)修飾的特殊寡核苷酸。